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Lowry-Test

aus Wikipedia, der freien Enzyklopädie
Datei:Lowry assay Deepachandi 2020.jpg
Standardreihe von 0 bis 0,5 mg/ml BSA im Lowry-Test (oben) und Negativkontrolle und Probe (unten)

Der Lowry-Test ist eine biochemische Methode, um Proteine quantitativ zu bestimmen.<ref name="Lowry">Oliver H. Lowry, Nira J. Rosebrough, A. Lewis Farr und Rose J. Randall: Protein measurement with the Folin phenol reagent. In: J. Biol. Chem. Band 193, Nr. 1, 1951, S. 265–275. PMID 14907713 <templatestyles src="Webarchiv/styles.css" />{{#if:20070929111023 

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Prinzip

Der Lowry-Test beruht auf zwei Reaktionen. Der erste Schritt beruht auf der Biuretreaktion,<ref>A. G. Gornall, S. J. Bardawill, M. M. David: Determination of serum proteins by means of the biuret reaction. In: J Biol Chem. Band 177(2), 1949, S. 751–766. PMID 18110453.</ref> nämlich auf der Bildung eines blauvioletten, quadratisch-planaren Farbstoffkomplexes zwischen den Peptidbindungen und Kupfer(II)-Ionen in einer alkalischen Lösung. In einem zweiten Schritt wird Cu(II) durch die Peptidbindung zu Cu(I) reduziert. Dieses Cu(I) wiederum reduziert das gelbe Folin-Ciocalteu-Reagenz (Molybdatophosphorsäure und Wolframatophosphorsäure / Heteropolysäuren) zu Heteropolymolybdänblau.<ref>{{#invoke:Vorlage:Literatur|f}}{{#if: | {{#if: Vorlage:Cite book/ParamBool | Vorlage:Toter Link/archivebot | Vorlage:Webarchiv/archiv-bot }} 

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  }}</ref> Es können Proteinkonzentrationen von 0,1–1 µg Protein pro Milliliter bestimmt werden.<ref name="Lotti" />

Der Anteil an der Aminosäure Cystein trägt zur Blaufärbung bei.<ref>J. D. Everette, Q. M. Bryant, A. M. Green, Y. A. Abbey, G. W. Wangila, R. B. Walker: Thorough study of reactivity of various compound classes toward the Folin-Ciocalteu reagent. In: Journal of agricultural and food chemistry. Band 58, Nummer 14, Juli 2010, S. 8139–8144, doi:10.1021/jf1005935, PMID 20583841, }} PMC 4075968 (freier Volltext{{#if:|, PDF}}).</ref> Bezüglich der Zeitentwicklung der Blaufärbung nach Zugabe des Folin-Ciocalteu-Reagenz empfahl Lowry eine Wartezeit von 30 Minuten und dann die Extinktion bei 750 Nanometer zu messen. Die Intensität der Blaufärbung nimmt im Zeitraum zwischen 30 und 120 Minuten zu, zwischen 120 und 240 Minuten bleibt sie stabil und nimmt anschließend wieder ab.<ref>Christopher Pomory: Color development time of the Lowry protein assay. In: Anal. Biochem. Band 378, Nr. 2, 2008, S. 216–217. PMID 18448065 doi:10.1016/j.ab.2008.04.015.</ref> Darüber hinaus empfehle es sich die Lowry-Reagenzien mit Wasser statt mit Natriumhydroxid anzusetzen, dagegen jedoch die Proteinlösungen in 1 M Natriumhydroxid. Weiterhin seien zur Messung der Extinktion per Photometrie eine Wellenlänge von 660 Nanometern geeigneter als die üblichen 750 Nanometer. In der Literatur sind einige Verbesserungen und Weiterentwicklungen beschrieben worden. So hat Hartree 1972 eine Variante der Lowry-Methode vorgestellt, die u. a. die hohe Störanfälligkeit adressiert.<ref>E. F. Hartree: Determination of protein. A modification of the Lowry method that gives a linear photometric response. In: Anal. Biochem. Band 48, 1972, S. 422–427. PMID 4115981 doi:10.1016/0003-2697(72)90094-2.</ref> Allerdings ist beim Lowry-Test (wie auch beim Bradford-Test und dem BCA-Test) die Auswahl eines geeigneten Proteins für die Standardreihe wichtig, ansonsten sollte über andere Methoden wie den Mikro-Kjeldahl, Aminosäureanalyse oder die Biuret-Reaktion quantifiziert werden.<ref name="PMID10075906">C. V. Sapan, R. L. Lundblad, N. C. Price: Colorimetric protein assay techniques. In: Biotechnology and applied biochemistry. Band 29, Nummer 2, April 1999, S. 99–108, PMID 10075906.</ref>

Das Lowry-Reagenz besteht aus den wässrigen Stammlösungen A (100 g/L Natriumcarbonat, 0,5 M Natriumhydroxid), B (10 g/L Kupfersulfat-Pentahydrat) und C (20 g/L Kaliumtartrat), die in einem Mischungsverhältnis von 20:1:1 angesetzt werden.<ref name="Pingoud" /> Das Lowry-Reagenz wird 1:1 mit der Probe vermischt und 15 Minuten bei Raumtemperatur inkubiert.<ref name="Pingoud" /> Anschließend erfolgt die Farbstoffbildung durch Zugabe des 1:10 verdünnten Folin-Ciocalteu-Reagenz in einem Verhältnis von 2:3 und einer Inkubation bei Raumtemperatur für 45 Minuten.<ref name="Pingoud" /> Die resultierende intensive Färbung wird zur quantitativen Bestimmung der Proteinkonzentration mittels Photometrie bei 750 nm, 650 nm oder 540 nm vermessen.<ref name="Lotti">F. Lottspeich, J. W. Engels, A. Simeon (Hrsg.): Bioanalytik. 2. Auflage. Spektrum Akademischer Verlag, 2006, ISBN 3-8274-1520-9. S. 38.</ref>

Alternativen

Durch das Folin-Ciocalteu-Reagenz wird die Nachweisgrenze um den Faktor 100 im Vergleich zur Biuretreaktion gesenkt.<ref name="Pingoud">Alfred Pingoud: Arbeitsmethoden der Biochemie. Walter de Gruyter, 1997, ISBN 978-3-11-016513-5, S. 152.</ref> Die Lowry-Methode ist wesentlich empfindlicher als die Biuret-Methode wegen ihrer zweiten, zusätzlichen Farbreaktion. Allerdings ist der Lowry-Test zeitaufwändiger und störanfälliger als die Biuretreaktion. So wird diese von nicht-proteinogenen Substanzen sowie von den häufig eingesetzten Stoffen EDTA, Triton X-100 oder Ammoniumsulfat gestört.<ref name="Lotti" />

Im Vergleich zum BCA-Test<ref>P. K. Smith et al.: Measurement of protein using bicinchoninic acid. In: Anal. Biochem. Band 150, Nr. 1, 1985, S. 76–85. PMID 3843705 doi:10.1016/0003-2697(85)90442-7.</ref> ist die dort verwendete Bicinchoninsäure im alkalischen pH-Wert stabil, wodurch im Gegensatz zum Lowry-Test ein Arbeitsschritt weniger notwendig ist.<ref name="Walker">John M. Walker: The Protein Protocols Handbook. Springer Science & Business Media, 2008, ISBN 978-1-60327-259-9, S. 11.</ref> Die Nachweisgrenze ist vergleichbar mit dem Lowry-Test.<ref name="Walker" /> Weiterhin ist der BCA-Test weniger störanfällig gegenüber den Chaotropen Harnstoff und Guanidiniumchlorid, gegenüber den Salzen Ammoniumsulfat und Cäsiumhydrogencarbonat und gegenüber den Tensiden Triton X-100, SDS, Brij 35, Lubrol, CHAPS, CHAPSO und Octylglucosid.<ref name="Walker" />

Als weitere Alternative bietet sich die einfachere Proteinbestimmung nach Bradford an, die ähnlich empfindlich wie der Lowry-Test ist. Der Vorteil der Lowry-Methode und der BCA-Methode gegenüber der Methode nach Bradford ist, dass mit ihr auch Proteinkonzentrationen in Lösungen bestimmt werden können, die Natriumlaurylsulfat (SDS) enthalten, welches die Bestimmung nach Bradford behindern würde.<ref>J. R. Dulley und P. A. Grieve: A simple technique for eliminating interference by detergents in the Lowry method of protein Determination. In: Anal Biochem. Band 64, Nr. 1, 1975, S. 136–141. PMID 1137083 doi:10.1016/0003-2697(75)90415-7.</ref>

Geschichte

Der Lowry-Test wurde 1951 von Oliver Lowry, Nira J. Rosebrough, A. Lewis Farr und Rose J. Randall veröffentlicht.<ref name="Lowry" /> Er basiert auf der Biuret-Reaktion zur Proteinbestimmung von Allan G. Gornall, Charles J. Bardawill und Maxima M. David aus dem Jahr 1949<ref>A. G. Gornall, S. J. Bardawill, M. M. David: Determination of serum proteins by means of the biuret reaction. In: J Biol Chem. Band 177(2), 1949, S. 751–766. PMID 18110453.</ref> und greift auf das Folin-Ciocalteu-Reagenz von Otto Folin und Vintilă Ciocâlteu aus dem Jahr 1927 zurück.<ref>{{#invoke:Vorlage:Literatur|f}}{{#if: 

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Literatur

  • G. L. Peterson: Review of the Folin phenol protein quantitation method of Lowry, Rosebrough, Farr and Randall. In: Analytical biochemistry. Band 100, Nummer 2, Dezember 1979, S. 201–220, doi:10.1016/0003-2697(79)90222-7, PMID 393128.

Einzelnachweise

<references />

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